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易科泰藻類高通量光合作用測量系統

參考價面議
具體成交價以合同協議為準
  • 公司名稱北京易科泰生態技術有限公司
  • 品       牌易科泰
  • 型       號
  • 所  在  地北京市
  • 廠商性質生產廠家
  • 更新時間2024/8/1 17:20:35
  • 訪問次數411
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北京易科泰生態技術有限公司成立于2002年,為國家高新技術企業,總部位于北京中關村翠湖云中心,致力于生態、農業、健康科學研究與監測/檢測技術方案推廣、研發與應用服務,營業范圍主要包括:

1)  自然科學研究與實驗發展,生態-資源-環境實驗研究與監測/檢測技術

2)  農業科學研究與實驗發展,作物表型組學研究技術、種質資源檢測鑒定與保護技術等

3)  醫學研究與實驗發展,生物醫學研究技術、能量代謝測量技術、中醫藥研究技術等

4)  技術開發、轉讓、咨詢、服務及國際儀器設備營銷

易科泰生態技術公司設立有如下研究實驗發展機構:

1)  EcoTech®實驗室(北京),配備有國際實驗研究檢測技術儀器裝備,如葉綠素熒光成像系統、多光譜熒光成像系統、高光譜成像系統、紅外熱成像儀、動物呼吸代謝測量系統、人體能量代謝測量系統等,可提供作物表型分析與種質資源檢測鑒定、生物安全與生物檢測、食品檢測、中藥品質檢測鑒定、動物能量代謝測量等實驗分析服務與合作研究。

2)  易科泰光譜成像與無人機遙感技術研究中心(西安),致力于光譜成像特別是高光譜成像創新應用研發集成、近地遙感與無人機遙感技術研發集成等。

3)  阿拉善蒙古牛生態牧業研究院,致力于以國家畜禽遺傳資源保護物種蒙古牛為旗艦的農業種質資源保護與可持續利用、草原生態保護與可持續利用研究與實驗發展。

4易科泰生態醫學研究所(內蒙阿拉善),致力于民族醫學特別是中醫、蒙醫與生態健康研究實驗發展

易科泰生態技術公司與全球幾十家國際科研儀器技術公司建立有代理關系或合作關系,如美國Sable公司(動物能量代謝測量研究)、捷克PSI公司(葉綠素熒光技術、植物表型分析技術等)、芬蘭Specim公司(高光譜成像技術)、法國YellowScan公司(激光雷達技術)、歐盟CEITEC研究中心(LIBS技術)、英國ADC公司(植物光合作用)等,與國際合作引進推廣了大量優異的研究技術和儀器技術,為我國農業、林業、水資源管理、生態環境研究及醫學健康等領域科技進步提供了有力的技術支撐。公司還與捷克PSI植物與藻類表型分析研究中心、歐盟CEITEC激光光譜學實驗室、美國Sable公司動物能量代謝實驗室、西班牙BCN無人機遙感中心建立合作關系,致力于國際技術的推介、學術交流、培訓、人才培養(如博士生培養等)、研究合作等。

“工欲善其事,必先利其器”,易科泰生態技術公司將秉承“利其器,善其事”的經營理念,為國內生態、農業、健康研究與事業發展提供優異技術服務與技術方案。



葉綠素熒光成像,多功能高光譜成像,高通量表型成像分析,FMS能量代謝測量系統
藻類高通量光合作用測量系統具備葉綠素熒光成像和光合放氧測量的功能,通過測定微藻的葉綠素熒光參數和氣體交換參數,評價其光化學轉化效率和光合速率,全面評估微藻光合作用物質和能量的轉化。系統具備快速、高通量的特點,可同時對96個樣品進行測量。系統廣泛用于藻類光合生理研究、藻類突變體篩選、藻類遺傳改良、藻類養殖、污水處理、生物燃料和生物肥料的制造等研究和應用領域。
易科泰藻類高通量光合作用測量系統 產品信息

  藻類高通量光合作用測量系統具備葉綠素熒光成像和光合放氧測量的功能,通過測定微藻的葉綠素熒光參數和氣體交換參數,評價其光化學轉化效率和光合速率,全面評估微藻光合作用物質和能量的轉化。系統具備快速、高通量的特點,可同時對96個樣品進行測量。系統廣泛用于藻類光合生理研究、藻類突變體篩選、藻類遺傳改良、藻類養殖、污水處理、生物燃料和生物肥料的制造等研究和應用領域。  

易科泰藻類高通量光合作用測量系統

藻類葉綠素熒光成像儀及其成像圖 


易科泰藻類高通量光合作用測量系統 

四肩突四鞭藻(綠藻)的光合速率(A)和呼吸速率(B)隨溫度的變化(Bernhardt et al., 2017)

 

功能特點

· 高通量:近百個樣品同時測量

· 全面評價光合作用:藻類葉綠素熒光參數和光合速率均可測定

· 非侵入性和非破壞性測量

· 系統簡單易用

· 氧氣測量高精度、高可靠性、低功耗、低交叉敏感性、快速響應時間


技術參數

1. 測量參數:Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm', Fv/ Fm, Fv', Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qL, QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多個葉綠素熒光參數以及光合速率、呼吸速率

2. 可同時對近百個藻類樣品進行測量

3. 葉綠素熒光成像單元具備完備的自動測量程序(protocol),可自由對自動測量程序進行編輯,包括Fv/Fm、Kautsky誘導效應、熒光淬滅分析、光響應曲線LC。

4. 葉綠素熒光數據分析模式:具備在低信噪比的情況下使用的“信號平均再計算”模式,以過濾掉噪音帶來的誤差,適用于低濃度的藻類樣品。

5. 葉綠素熒光成像分析軟件功能:具Live(實況測試)、Protocols(實驗程序選擇定制)、Pre–processing(成像預處理)、Result(成像分析結果)等功能菜單

6. 葉綠素熒光成像預處理:程序軟件可自動識別多個植物樣品或多個區域,也可手動選擇區域(Region of interest,ROI)。手動選區的形狀可以是方形、圓形、任意多邊形或扇形。軟件可自動測量分析每個樣品和選定區域的熒光動力學曲線及相應參數,樣品或區域數量不受限制(>1000)

7. 氧氣檢測技術:光纖氧傳感器技術。

8. 測量呼吸室:透明聚苯乙烯材質,支持預消毒處理,可重復使用。

9. 氧氣測量主機:單個重670 g,162 x 102 x 32 mm

10. 氧氣主機內置溫度傳感器:0-50°C,分辨率0.012°C,精度±0.5°C

11. 氧氣主機內置壓強傳感器:300-1100mbar,分辨率0.11mbar,精度±6mbar

12. 氧氣蕞大采樣頻率:單通道激活時可達10-20次每秒

13. 氧氣測量精度:±0.1% O2@1% O2或±0.05 mg/L@0.44 mg/L

14. 氧氣測量分辨率:0.01% O2@1% O2或0.005 mg/L@0.44 mg/L

15. 測量通道數:96

 

應用案例

1. Perin等人采用藻類高通量光合作用測量系統初步篩選微擬球藻(Nannochloropsis gaditana)的高光效突變體。研究小組使用化學引變劑乙基甲烷磺酸鹽(EMS)誘導突變和插入突變兩種方式生成突變體庫,使用葉綠素熒光成像技術檢測其光合活性的可能變化,使用的葉綠素熒光參數包括蕞小熒光F0、蕞大光化學效率Fv/Fm、有效光化學效率ΦPSII、光系統調節能力NPQ(Perin et al., 2015)。

 

易科泰藻類高通量光合作用測量系統 

微擬球藻熒光強度篩選

左-F0(紅圈為野生型,白圈為篩選出的、熒光過低或過高的突變體);右:葉綠素熒光的定量(紅點代表野生型,籃圈代表篩選出的突變體,綠色三角表示平均值±標準差)(Perin et al., 2015)


2. 不列顛哥倫比亞大學生物多樣性研究中心使用了藻類高通量光合作用測量系統評估了全 球變暖對斜生柵藻(Scenedesmus obliquus)光合速率和呼吸速率的影響,發現兩者均對測試溫度表現出一定的可塑性。不同選擇溫度(12℃、18℃)的柵藻光合速率無差異;而高溫選擇(18℃)的柵藻相對低溫選擇(12℃)的柵藻,具有更高的呼吸速率(Tseng et al., 2019)。


易科泰藻類高通量光合作用測量系統 

不同溫度選擇(12℃、18℃)的斜生柵藻光合速率(左)和呼吸速率(右)隨測試溫度的變化(Tseng et al., 2019)

 

參考文獻

1. Claudi, R., Alei, E., Battistuzzi, M., Cocola, L., Erculiani, M.S., Pozzer, A.C., Salasnich, B., Simionato, D., Squicciarini, V., Poletto, L., La Rocca, N., 2021. Super-Earths, M Dwarfs, and Photosynthetic Organisms: Habitability in the Lab. Life 11(1): 10

2. Dann, M., Ortiz, E.M., Thomas, M., Guljamow, A., Lehmann, M., Schaefer, H., Leister, D., 2021. Enhancing photosynthesis at high light levels by adaptive laboratory evolution. Nat. Plants 7, 681–695.

3. Gavel, A., Mar?álek, B., 2004. A novel approach for phytotoxicity assessment by CCD fluorescence imaging. Environmental Toxicology 19, 429–432.

4. Herdean, A., Hall, C., Hughes, D.J., Kuzhiumparambil, U., Diocaretz, B.C., Ralph, P.J., 2023. Temperature mapping of non-photochemical quenching in Chlorella vulgaris. Photosynth Res 155, 191–202.

5. Macário, I.P.E., Veloso, T., Frankenbach, S., Ser?dio, J., Passos, H., Sousa, C., Gon?alves, F.J.M., Ventura, S.P.M., Pereira, J.L., 2022. Cyanobacteria as Candidates to Support Mars Colonization: Growth and Biofertilization Potential Using Mars Regolith as a Resource. Front Microbiol 13, 840098.

6. Nowicka, B., 2020. Practical aspects of the measurements of non‐photochemical chlorophyll fluorescence quenching in green microalgae Chlamydomonas reinhardtii using Open FluorCam. Physiologia Plantarum 168, 617–629.

7. Perozeni, F., Stella, G., Ballottari, M., 2018. LHCSR Expression under HSP70/RBCS2 Promoter as a Strategy to Increase Productivity in Microalgae. IJMS 19, 155.

8. Tseng, M., Bernhardt, J.R., Chila, A.E., 2019. Species interactions mediate thermal evolution. Evolutionary Applications 12, 1463–1474.

9. Bernhardt, J.R., Sunday, J.M., O’Connor, M.I., 2017. An empirical test of the temperature dependence of carrying capacity. bioRxiv, 210690.

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