（一）材料與試劑 
1．小牛血清 取新生的小牛，無菌采血，分離血清。于56℃滅活后分裝小瓶，放入低溫冰箱保存。 
2．雙抗 配成每毫升含青霉素1.00×104U，鏈霉素1.00×104U的混合液。存放于-20℃。 
3．6%NaHCO3水溶液 
4．肝素 以滅菌生理鹽水配成500U/ml，115℃滅菌30min，4℃保存備用。 
5．PHA 以滅菌生理鹽水配成1 000µg/ml，經G-5漏斗過濾，分裝小瓶，保存于-20℃備用。 
6．姬姆薩染液、瑞氏染液。 
7．pH6.4磷酸鹽緩沖液： 
KH2PO4 6.62g 
Na2HPO4 2.56g 
H2O 1 000.00ml 
8．營養液 采用199營養液或RPMI－1640營養液，配法如下： 
199營養液 79.00ml 
小牛血清 20.00ml 
“雙抗" 1.00ml 
依次加入后，再用高壓滅菌的6% NaHCO3液調pH至7.2～7.3，分裝小瓶，每 瓶0.2ml。 
（二）操作方法 
1． 于培養瓶內加0.2ml馬血，對照組與試驗組各做2瓶，試驗組均加PHA 30µg； 
2．37℃培養72h，每天輕搖1~2次； 
3．取出培養瓶，搖散血塊，倒入離心管，3 000r/min離心10min，去上清液； 
4．用血球泥制備推片，晾干； 
5．以瑞氏染液染2min~3min，加等量緩沖液，混勻繼續染3min，蒸餾水沖洗后再用姬姆薩染液染2min~3min。加等量緩沖染液感作7min~8min，餾水沖洗，晾干； 
6．鏡檢，觀察，計數。 
（三）結果判定 
在油鏡下，觀察淋巴細胞的形態變化（見表21-1），以頭、體、尾三部分計算，至少計數100個或200個淋巴細胞，然后按公式計算出淋巴細胞形態轉化率。 
成年馬的淋巴細胞轉化率，根據原獸醫大學20例檢查，平均為35.58%。
淋巴細胞轉化試驗技術:形態學檢查法
不加PHA的對照組一般不轉化或轉化率只在1%左右。
表21-1 淋巴細胞轉化前后形態學特點

轉化淋巴細胞的形態特征：①體積增大，約大于原成熟的淋巴細胞的2~3倍；②細胞核膜清晰,核內染色質疏松呈網狀結構，可見1~3個核仁,有的核呈分裂相；③胞漿豐富，有嗜堿性染色，核周圍的胞漿有一些淡染的透明帶，細胞呈偽足狀突起。 
（四）注意事項 
1．培養液zui適pH為7.2~7.4，過酸過堿都會影響細胞的生長而降低轉化率。培養液的類型與動物的白細胞有關，如小鼠的淋轉試驗，用RPMI-1640，用199液則不成功。 
2．培養時間 以72h~120h轉化率zui高，超過這個時間，則轉化率反而下降。 
3．吞噬細胞有時在形態上易與“過渡型"混淆。但巨噬細胞有其固有的特點，核占細胞比較小且偏一邊，核染色質濃集，細胞漿呈藍灰色或紅褐色，胞漿內有大小不等的顆?；蛲淌晌?，且含有大小不等的氣泡。 
4．涂片要少蘸些細胞，推出尾部來，因淋巴細胞較大，易集中在尾部及邊緣。 
5．觀察淋巴細胞轉化，染色不要太濃，以便觀察核仁。 
6．嚴格的無菌操作，是淋巴細胞轉化試驗成功的關鍵。